PRODUCTOS NATURALES
Atividade antifúngica do óleo essencial de Melissa officinalis sobre isolados de Cladosporium sphaerospermum
Actividad antifúngica de aceite esencial de Melissa officinalis en aislados de Cladosporium sphaerospermum
Antifungal activity of the essential oil of Melissa officinalis on Cladosporium sphaerospermum isolates
Jessyca Marina Carneiro Gomes dos Santos,I Camilla Pinheiro de Menezes,I Abrahão Alves de Oliveira Filho,II Edeltrudes de Oliveira LimaI
I Universidade
Federal da Paraíba. João Pessoa. Paraíba, Brasil.
II Universidade
Federal de Campina Grande. Patos. Paraíba, Brasil.
RESUMO
Introdução:
O gênero Cladosporium abrange muitas espécies de fungos
contaminantes e oportunistas dematiáceos, sendo encontrados em diversos
ambientes. As espécies C. cladosporioides, C. herbarum, C. oxysporum,
C. carrionii e C. sphaerospermum têm sido observadas como responsáveis
primárias por quadro de feohifomicoses superficiais, cromoblastomicoses
e feohifomicoses profundas, que são micoses difíceis de tratar devido
ao longo período de tratamento, às limitadas opções terapêuticas,
às condições da imunidade do doente e à relativa resistência
do fungo aos antifúngicos utilizados.
Objetivo:
Avaliar a atividade antifúngica, in vitro, do óleo essencial
de Melissa officinalis L. (Lamiaceae) sobre isolados clínicos
de C. sphaerospermum.
Métodos:
Foi realizada a determinação da concentração inibitória
mínima e concentração fungicida mínima pela técnica
de microdiluição e medida do crescimento micelial radial em diferentes
intervalos de tempo.
Resultados:
O óleo essencial de M. officinalis inibiu o crescimento de 100 %
das isolados ensaiadas, tendo sua concentração inibitória mínima
igual a 64 μg/mL. A concentração fungicida mínima foi estabelecida
em 128 μg/mL e concentração fungicida mínima 256 μg/mL,
sendo considerado um produto com forte atividade antifúngica. Este óleo
também foi capaz de induzir inibição do crescimento micelial
radial para as duas isoladas testadas, quando comparadas ao controle.
Conclusão:
O óleo essencial de M. officinalis apresenta importante atividade
antifúngica contra isolados de C. sphaerospermum, representando
uma nova possibilidade no arsenal de produtos para terapêutica das micoses
causadas por esses fungos.
Palavras-Chave: óleo essencial; Melissa officinalis; Cladosporium sphaerospermum.
RESUMEN
Introducción: El género Cladosporium incluye muchas especies
de contaminantes y dematiáceos hongos oportunistas, que se encuentran en
muchos entornos. Se ha observado que las especies C. cladosporioides, C.
herbarum, C. oxysporum, C. carrionii y C. sphaerospermum se encargan de
la superficie feohifomicosis marco primaria, cromoblastomicosis y feohifomicosis
profundas, que son micosis difíciles de tratar debido al largo período
de tratamiento y por las limitadas opciones de este para pacientes en determinadas
condiciones de inmunidad y con resistencia a los agentes antifúngicos utilizados.
Objetivo:
Avaluar la actividad antifúngica in vitro del aceite esencial de
Melissa officinalis L. (Lamiaceae) en aislados clínicos de
C. sphaerospermum.
Método:
Se determinó la concentración mínima inhibitoria y la concentración
mínima fungicida mediante la técnica de microdilución a través
de la medición del crecimiento del micelio radial en diferentes intervalos
de tiempo.
Resultados:
El aceite esencial de M. officinalis inhibió el crecimiento de 100
% de los aislados ensayados, y su concentración mínima inhibitoria
fue de 64 μg/mL. La concentración mínima fungicida se estableció
en 128 μg/mL y 256 μg/mL, se considera un producto con fuerte actividad
antifúngica. Este aceite también fue capaz de inducir la inhibición
del crecimiento micelial radial para ambos aislados ensayados en comparación
con el control.
Conclusiones:
El aceite esencial de M. officinalis tiene importante actividad antifúngica
frente a aislados de C. sphaerospermum, lo que representa una nueva posibilidad
en el arsenal de productos para el tratamiento de las infecciones fúngicas
causadas por estos hongos.
Palabras clave: aceite esencial; Melissa officinalis; Cladosporium sphaerospermum.
ABSTRACT
Introduction:
Cladosporium genus includes many species of contaminants and opportunistic
dematiaceous fungi that can be found in many environments. The speciesC.
cladosporioides, C. herbarum C. oxysporum, C. carrionii and C. sphaerospermum
have been observed to be responsible for primary frame feohifomycoses surface,
and deep feohifomycoses and cromoblastomycoses, which are mycoses difficult
to treat due to the long period of treatment, the limited treatment options
for patients with specific immunity conditions and resistance to antifungal
agents used.
Objective:
To evaluate the antifungal in vitro activity of essential oil of Melissa
officinalis L. (Lamiaceae) on clinical isolates of C. sphaerospermum.
Method :
Minimum inhibitory concentration and minimum fungicidal concentration were determined
by microdilution technique, measuring the radial mycelium growth in different
time intervals.
Results:
The results show that the essential oil from M. officinalis inhibited
the growth of 100 % of tested isolates, and their minimum inhibitory concentration
was of 64 μg/mL. Minimum fungicidal concentration was established at 128
μg/mL and 256 μg/mL. It is considered a product with strong antifungal
activity. This oil was also able to induce inhibition of the radial mycelial
growth for both tested isolates when compared to control.
Conclusions:
The essential oil of M. officinalis has important antifungal activity
against isolates of C. sphaerospermum which represents a new possibility
in the arsenal of products for treatment of fungal infections caused by these
fungi.
Keywords: essential oil; Melissa officinalis; Cladosporium sphaerospermum.
INTRODUÇÃO
Micoses oportunistas são cada vez mais comuns em pacientes imunocomprometidos. Sua incidência tem aumentado nas últimas décadas, pois a população em geral é mais exposta a fatores que favorecem a infecção micótica.1,2
O gênero Cladosporium abrange muitas espécies de fungos contaminantes e oportunistas dematiáceos que são encontrados como saprófitas no solo, nas plantas e em materiais em decomposição. Algumas espécies têm uma relevância médica por estarem relacionadas a saúde humana, causando quadros de patologias oportunistas em pacientes imunossuprimidos.3-5
As espécies C. cladosporioides, C. herbarum, C. oxysporum, C. carrionii e C. sphaerospermum têm sido observadas como responsáveis primárias por quadro de alergias, feo-hifomicoses superficiais (onicomicoses, ceratites, entre outros.), cromoblastomicoses e feo-hifomicoses profundas (meningites, quadro pulmonares, entre outras).6-8
C. sphaerospermum é um importante fitopatógeno, sendo muito prejudicial para as culturas vegetais.7 Para os seres humanos e animais, nem todas as cepas são patogênicas, entretanto algumas cepas podem provocar ocasionalmente feo-hifomicose cutânea e cerebral independentemente do estado imunitário do hospedeiro.9,10
Considerando a perspectiva de obtenção de novos fármacos para o tratamento dessas micoses, as plantas têm representado uma fonte valiosa de produtos para manutenção da saúde humana, havendo um aumento dessa tendência especialmente nos últimos anos, após numerosos estudos com produtos terapêuticos de plantas medicinais, em especial os óleos essenciais.11,12
Com base na ampla atividade biológica apresentada pelos óleos essenciais, esse estudo tem como objetivo investigar a atividade antifúngica do óleo essencial das folhas de M. officinalis L. (Lamiaceae) contra duas cepas de C. sphaerospermum.
MÉTODOS
SUBSTÂNCIAS
O óleo essencial das folhas de M. officinalis L. sintético com alto teor de pureza foi obtido na empresa Quinari Ind. Com. Ltda., Ponta Grossa, Paraná, Brasil, sob o lote nº 0717/05209/F. O antifúngico padrão anfotericina B foi adquirido da Sigma-Aldrich, Brasil. As substâncias foram dissolvidas em DMSO (dimetilsulfóxido) e água destilada estéril. A concentração de DMSO não excedeu 0,5 % nos ensaios.
ESPÉCIES FÚNGICASPara realização dos ensaios de atividade antifúngica foram selecionados 2 isolados clínicos de C. sphaerospermum (URM 5 962 e URM 5 350), pertencentes à coleção de culturas da Micoteca do Departamento de Micologia, Centro de Ciências Biológicas, Universidade Federal de Pernambuco. Todos os isolados foram mantidos em Ágar Sabouraud Dextrose-ASD inclinado (DIFCO Laboratories Ltda, USA) a temperatura ambiente (28 ºC) e sob refrigeração (4 ºC).
INÓCULO
Para preparação do inóculo, os isolados fúngicas selecionadas foram mantidas no meio de cultura, por 10-14 dias, a temperatura de 28 ºC para atingirem um crescimento satisfatório. As recentes colônias fúngicas foram devidamente cobertas com 5 mL de solução salina estéril (NaCl 0,85 % p/v), e as suspensões feitas por suaves agitações e raspagens com auxílio de uma alça de platina em "L". A mistura resultante de conídios e fragmentos de hifas foi retirada e transferida para tubos de ensaio esterilizados. Em seguida, essas suspensões foram agitadas por 2 minutos com auxílio do aparelho Vortex (FANEM). Após agitação, cada suspensão teve sua turbidez comparada e ajustada àquela apresentada pela suspensão de sulfato de bário do tubo 0,5 da escala McFarland, a qual corresponde a um inóculo de aproximadamente 106 unidades formadoras de colônias/mL (UFC/mL). Por fim, foi realizado contagem celular em câmara de Neubauer e as suspensões ajustadas no espectrofotômetro (SP220/200-1000nm, São Paulo, Brasil), para conter aproximadamente 1x106 UFC/mL.13,14
CONCENTRAÇÃO INIBITÓRIA MÍNIMA (MIC)
A determinação da concentração inibitória mínima foi realizada utilizando-se o óleo essencial de M. officinalis e anfotericina B. Os ensaios foram realizados por meio da técnica de microdiluição em caldo, utilizando placas de 96 orifícios estéreis e com tampa. Em cada orifício da placa, foi adicionado 100 μL do meio líquido caldo Sabouraud dextrose (CSD). Em seguida, 100 μL das soluções dos produtos teste na concentração inicial de 2 048 μg/mL, foram dispensados nas cavidades da primeira linha da placa. E por meio de uma diluição seriada em razão de dois, foram obtidas as concentrações de 4 a 1 024 μg/mL. Por fim, foi adicionado 10 μL do inóculo de aproximadamente 1-5 x 106 UFC/mL das espécies fúngicas nas cavidades. As placas foram assepticamente fechadas e incubadas a 28 oC por 5 dias (e confirmada em 7 dias), sem anaerobiose, para realização da leitura. As CIMs para o óleo essencial e o antifúngico padrão foram definidas como a menor concentração capaz de inibir visualmente o crescimento fúngico verificado nos orifícios quando comparado com o crescimento controle. Os experimentos foram realizados em duplicata.15
DETERMINAÇÃO DA CONCENTRAÇÃO FUNGICIDA MÍNIMA (CFM)A concentração fungicida mínima do óleo essencial foi determinada para todos os isolados clínicos de Cladosporium. Após a leitura da CIM em 7 dias, alíquotas de 10 μL foram retiradas de cada cavidade da placa de microdiluição onde não houve crescimento fúngico e foram subcultivadas em uma placa de Petri (90 x 15 mm) contendo ASD. O sistema foi incubado a 28 oC por 72 horas. A CFM foi definida como a menor concentração do óleo essencial, semeada em ASD, em que não houve crescimento, ou o crescimento foi menor que 3 UFC.16,17 Os experimentos foram realizados em duplicata.
DETERMINAÇÃO DA CINÉTICA DE CRESCIMENTO MICELIALPara a determinação da cinética de crescimento micelial radial, foi selecionada a isolados clínicos de C. sphaerospermum URM 5 350, baseando-se nos resultados obtidos na determinação das CIMs e CFMs do produto avaliado. A inibição do crescimento micelial fúngico foi determinada utilizando-se a técnica de diluição em meio sólido. Este estudo baseou-se na medida do crescimento micelial radial em ASD adicionado do óleo essencial nas concentrações CIM, CIM X 2 e CIM X 4, em diferentes intervalos de tempo. Para a execução da técnica, inicialmente, uma porção de 2 mm de diâmetro foi tomado de uma cultura com crescimento de 7-14 dias em Ágar Sabouraud, a 28 oC, e colocada no centro de uma placa de Petri estéril com meio ASD adicionado do óleo essencial, nas diferentes concentrações. O sistema foi incubado a temperatura ambiente. Em diferentes intervalos de tempo (0, 2, 4, 6, 8, 10, 12 e 14 dias) após incubação, o crescimento micelial radial da colônia fúngica foi medido e o resultado expresso em milímetros (mm).
Os controles foram realizados por meio da medida do crescimento micelial em ASD na ausência do óleo essencial, ou adicionado anfotericina B (CIM, CIM X 2 e CIM X 4). Foram realizados dois experimentos independentes em diferentes ocasiões e os resultados representam a média ± erro padrão dos dois experimentos.18,19
RESULTADOS
Os resultados da CIM e CFM, do óleo essencial de M. officinalis sobre isolados clínicos de Cladosporium encontram-se representadas na tabela 1. Como pode ser observado, a CIM do óleo essencial testado foi de 64 μg/mL. A CFM do óleo essencial de M. officinalis variou entre 128 e 256 μg/mL. O antifúngico padrão (anfotericina B) exerceu efeitos inibitórios frente as cepas testadas, apresentando CIM de 16 μg/mL.
Todas as cepas fúngicas foram capazes de crescer em CSD sem a adição do óleo essencial ou antifúngico padrão, o que caracteriza sua viabilidade (controle da cepa).
Com base nos resultados encontrados dos valores de CIM e CFM, foi avaliada a interferência do óleo essencial de M. officinalis e da anfotericina B sobre a cinética de inibição do crescimento radial (mm) para a isolados clínicos C. sphaerospermum (URM 5 350) a fim de observar o efeito de diferentes concentrações desses produtos ao longo do tempo.
O ensaio de cinética de crescimento fúngico foi realizado utilizando a técnica de diluição em meio sólido e os resultados obtidos foram expressos na tabela 2 que mostram o crescimento micelial radial, em mm, de C. sphaerospermum (URM 5 350) na presença da CIM (256 μg/mL), CIMX2 (512 μg/mL) e CIMX4 (1024 μg/mL) do óleo essencial de M. officinalis e da anfotericina B (CIM 16 μg/mL), em função dos dias de exposição (0, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14).
Este estudo revelou um efeito fungicida do óleo essencial de M. officinalis,
quando testado nas diferentes concentrações, sobre os isolados clínicos
de C. sphaerospermum. De acordo com a tabela 2, após os 14 dias
do ensaio, observou-se uma redução do crescimento micelial dos fungos
quando comparados com o grupo controle (não tratado), sendo o perfil de
inibição do crescimento, semelhante para as duas cepas testadas. De
modo que, o crescimento fúngico das duas cepas na presença do óleo
essencial foi sempre menor que o observado para o ensaio controle. Como pode
ser observado no 14º dia de exposição, a amostra controle de
C. sphaerospermum apresentou crescimento micelial igual a 52 mm, enquanto
que o crescimento máximo observado para a cepa na presença do óleo
(CIM) foi de 6mm.
Em se tratando
do antifúngico padrão (anfotericina B) também observou-se uma
inibição no crescimento micelial induzido por esse antifúngico,
para a cepa testada. Entretanto, a inibição foi menor que a apresentada
pelo óleo essencial de M. officinalis, visto que na presença
do óleo essencial, nas diferentes concentrações, o crescimento
micelial radial máximo foi de 6 mm (CIM) no 14º. dia de exposição.
Na presença da anfotericina B, houve um crescimento inibido quando comparado
com o controle, porém que chegou a 17 mm (anfotericina B-CIM). Mesmo nas
maiores concentrações (CIMx2 e CIMx4), o antifúngico padrão
não foi capaz de inibir o crescimento de forma tão eficaz como observado
com o óleo essencial, indicando o bom efeito antifúngico do óleo
essencial testado.
DISCUSSÃO
Sartoratto e colaboradores elencaram critérios para categorizar o poder antimicrobiano de óleos essenciais com base no valor de CIM, onde óleos com CIM≤500 μg/mL são considerados com forte atividade antimicrobiana, com 500 μg/mL< CIM≤ 1 500 μg/mL possuem moderada atividade e CIM>1 500 μg/mL é considerado com fraca atividade.20 Desta forma, pode-se considerar que o óleo essencial de M. officinalis possui forte atividade antimicrobiana frente às isolados clínicos de C. sphaerospermum testadas.
Desse modo, os valores de CIM para isolados clínicos de C . sphaerospermum obtidos neste trabalho apresentam coerência com os resultados observados por Ozcakmak e colaboradores que determinaram a CIM e CFM do óleo essencial de M. officinalis sobre cepas de Penicilium verrucosum. A CIM obtida foi de 125 μg/mL e a CFM igual a 250 μg/mL.21
Quando se compara a atividade de produtos naturais com a de antimicrobianos padrões, não existe ainda um consenso sobre o nível de inibição aceitável. A comparação dos resultados de atividade anti-Cladosporium do óleo essencial de M. officinalis com a da anfotericina B, mostra que o antifúngico padrão apresentou valor de CIM inferior as do óleo essencial. Entretanto, esta diferença entre as concentrações do óleo essencial e do antifúngico padrão pode ser explicada em termos pelo fato de que os componentes ativos no óleo compreendem apenas uma fração do óleo usado. Dessa forma, a concentração dos componentes ativos pode ser muito menor do que o antifúngico padrão utilizado. Portanto, é importante salientar que, se os componentes ativos forem isolados e purificados, eles provavelmente apresentarão atividade antimicrobiana superior às observadas no presente estudo.22,23
Os fungos filamentosos de interesse médico possuem um aparelho de reprodução, cujos órgãos se diferenciam para servir à reprodução e um aparelho de vida vegetativa denominado micélio. Esse micélio é geralmente formado por um aglomerado de células, o qual pode ser filamentoso septado ou não-septado. A hifa, filamento fúngico ou um segmento do micélio filamentoso, constitui, em seu conjunto, o micélio dos fungos.24
Assim como outros fungos filamentosos, fungos do gênero Cladosporium apresentam um simples ciclo celular não sexual, no qual forma-se uma colônia micelial via crescimento da hifa, que resulta do alongamento linear do seu ápice. Ainda, em um processo infeccioso, o crescimento longitudinal da hifa facilita a penetração nas camadas mais internas da pele, enquanto o crescimento lateral pode agravar os danos.25,26
Por isso, alguns pesquisadores vêm investigando o potencial de óleos essenciais em inibir o crescimento micelial de fungos patogênicos por meio da medida do crescimento micelial radial, dada a sua importância no desenvolvimento das micoses.14,27
A inibição do crescimento micelial, observada neste estudo, com o uso do óleo essencial de M. officinalis, foi semelhante ao encontrado por Menezes e colaboradores para este mesmo óleo contra cepas de Cladophialophora carrionii, sendo o óleo essencial capaz de inibir o crescimento micelial das duas cepas testadas nas concentrações de 256, 512 e 1024 μg/mL.28
Estudos desenvolvidos por Moura e colaboradores avaliaram a ação do óleo essencial de de Punica granatum no controle do crescimento micelial de C. sphaerospermum, e observaram que na concentração de 25 μL/mL a taxa de inibição foi superior a 50 % do crescimento.29
Moreira avaliando a cinética de crescimento micelial dos fungos dematiáceos C. cladosporidioides e F. compacta, frente ao óleo essencial de C. zeylanicum, observou total inibição do crescimento radial, na concentração de 125 μL/mL, ao longo de 14 dias de exposição.30
A análise da composição do óleo essencial das folhas de M. officinalis foi realizada em estudos anteriores e resultou na identificação de 4 componentes principais. Entre os fitoconstituintes, o geranial foi o componente predominante do óleo essencial de M. officinalis com 52 % do total de constituintes presentes, este monoterpeno já demonstrou várias atividades antimicrobianas, em especial, antifúngica, reforçando e justificando o possível responsável pela atividade antifúngica observada contra as cepas tratadas nesta pesquisa. 28,31
Portanto, pode-se concluir que o óleo essencial de M. officinalis apresenta um forte efeito antifúngico contra os isolados clínicos de C. sphaerospermum, tornando-se uma alternativa terapêutica para o combate desses fungos.
Conflicto de intereses
Los autores declaran que no presentan conflicto de intereses.
REFERÊNCIAS
1. Denning DW, Bromley MJ. Infectious Disease. How to bolster the antifungal pipeline. Science. 2015;27(347):1414-16.
2. Brown GD, Denning DW, Gow NA, Levitz SM, Netea MG, Branco TC. Hidden killers: human fungal infections. Sci. Transl. Med. 2012;19(4):165.
3. Crous PW, Shivas RG, Quaedvlieg W. Fungal Planet description sheets: 214-280. Persoonia. 2014;32:184-306.
4. Gutarowska B. Moulds in biodeterioration of technical materials. Folia Biol. Oecol. 2014;10:27-39.
5. Bensch K, Groenewald JZ, Braun U, Dijksterhuis J, Yañes-Morales MJ, Crous PW. Common but different: The expanding realm of Cladosporium. Stud. Mycol. 2015;82:23-74.
6. Deng S, De Hoog GS, Pan W, Chen M, Gerrtis Van Den End AHG, Yang L, Sun J, Naiafzadeh MJ, Liao W, Li R. Three Isothermal Amplification Techniques for Rapid Identification of Cladophialophora carrionii, an Agent of Human Chromoblastomycosis. J. Clin. Microbiol. 2014;52(10):3531-5.
7. Ahmed AN. Isolate and Diagnose the Fungus Cladosporium sphaerospermum as a Causal Agent of Date Palm Leaves Necrosis for the First Time in the Province of Basra, Iraq. Jordan J Agricul Sci. 2015;3(11):859-68.
8. Sandoval-Denis M, Sutton DA, Martin-Vicente A, Cano-Lira JF, Wiederhold N, Guarro J, Gené J. Cladosporium species recovered from clinical samples in the United States. J. Clin. Microbiol. 2015;53(9):2990-3000.
9. Soumagne T, Pana-Katatali H, Degano B, Dalphin JC. Combined pulmonary fibrosis and emphysema in hypersensitivity pneumonitis. BMJ Case Reports. Dec 2015. doi:10.1136/bcr-2015-211560.
10. Maduri A, Patnayak R, Verma A, Mudgeti N, Kalawat U, Asha T. Subcutaneous infections by Cladosporium sphaerospermum - A rare case report. Indian J. Pathol. Microbiol. 2015;58:406-7.
11. Negri M, Salci TP, Mesquita-Shinobu CS, Capoci IRG, Svidzinski TIE, Kioshima ES. Early State Research on Antifungal Natural Products. Molecules. 2014;19(3):2925-56.
12. Perfect JR. Is there an emerging need for new antifungals? Expert Opin. Emerg. Drugs. 2016; 21(2):129-31.
13. Santos DA, Barros MES, Hamdan JS. Establishing a method of inoculum preparation for susceptibility testing of Trichophyton rubrum and Trichophyton mentagrophytes. J. Clin. Microbiol. 2006;44:98-101.
14. Pereira FO, Mendes JM, Lima EO. Investigation on mechanism of antifungal activity of eugenol against Trichophyton rubrum. Med. Mycol. 2013;51(5):507-13.
15. Santos DA, Hamdan JS. Evaluation of broth microdilution antifungal susceptibility testing conditions for Trichophyton rubrum. J. Clin. Microbiol 2005;43(4):1917-20.
16. Espinel-Ingroff A, Fothergill A, Peter J, Rinaldi MG, Walsh TJ. Testing conditions for determination of, minimum fungicidal concentrations of new and established antifungal agents for Aspergillus spp: NCCLS collaborative study. J. Clin. Microbiol. 2002;40(9);3204-08.
17. Pereira FO, Wanderley PA, Viana FAC, Lima RB, Sousa FB, Lima EO. Growth inhibition and morphological alterations of Trichophyton rubrum induced by essential oil from Cymbopogon winterianus Jowitt ex bor. Braz. J. Microbiol. 2011;42(1):233-42.
18. Daferera DJ, Ziogas BN, Polission MG. The effetiveness of plant essential oils on the growth of Botrytis cinerea, Fusarium sp. and Clavibacter michiganensis subsp. Michaganensis. Crop Protection. 2003;22(1):39-44.
19. Thyágara N, Hosono A. Effect of spice extract on fungal inhibition. Lebensm. Wiss Technol. 1996;29(3):286-8.
20. Sartoratto A, Machado ALM, Delarmelina C, Figueira GM, Duarte MCT, Rehder VLG. Composition and antimicrobial activity of essential oils from aromatic plants used in Brazil. Braz. J. Microbiol. 2004;35:275-80.
21. Ozcakmak S, Dervisoglu M, Yilmaz A. Antifungal activity of lemon balm and sage essential oils on the growth of ochratoxigenic Penicillium verrucosum. Afr. J. Microbiol Res. 2012;6(12):3079-84.
22. Li JE, Nie SP, Qiu ZH, Che MJ, Li C, Xie MY. Antimicrobial and antioxidant activities of the essential oil from Herba Moslae. J. Sci. Food Agric. 2010; 90(8):1347-52.
23. Matasyoh JC, Maiyo ZC, Ngure RM, Chepkorir R. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oil of Coriandrum sativum. Food Chem. 2009;113(2):526-9.
24. Lacaz CL, Porto E, Martins JEC, Heins-Vaccari EM, Melo NT. Tratado de Micologia Medica. 9. ed. São Paulo: Sarvier; 2002.
25. Zurita J, Hay RJ. Adherence of dermatophyte microconidia and arthroconidia to human keratinocytes in vitro. J. Invest. Dermatol. 1987;89(5):529-34.
26. Gupta AK, Chaudhry M, Elewski B. Tinea corporis, tinea cruris, tinea nigra, and piedra. Dermatol. Clinics. 2003;21(3):395-400.
27. Guerra FQS, Araújo RSA, Sousa JP, Pereira FO, Mendonça-Junior FJB, Barbosa-Filho JM, et al. Evaluation of Antifungal Activity and Mode of Action of New Coumarin Derivative, 7-Hydroxy-6-nitro-2H-1-benzopyran-2-one, against Aspergillus spp. Evid Based Complement Alternat Med. 2015 [cited 2016 Aug 16]; 2015 [about 8 p.]. Available from: https://www.hindawi.com/journals/ecam/2015/925096/abs/
28. Menezes CP, Guerra FQS, Pinheiro LS, Trajano VN, Pereira FO, Souza VG, Souza FS, Lima EO. Investigation of Melissa officinalis L. Essential Oil for Antifungal Activity against Cladosporium carrionii. I. J. Tropical Disease. 2015;8(2):49-56.
29. Moura HFN, Dias LP, Sousa AL, Santos MWM, Nascimento VLV. Atividade fungitóxica do óleo essencial de Punica granatum sobre o crescimento micelial de Cladosporium sphaerospermum. Actas do IV Congresso de Pesquisa e Inovação da Rede Norte e Nordeste de Educação Tecnológica. 2009; Belém-PA; 2009.
30. Moreira ACP,
Lima EO, Souza EL, Van Dingenen MA, Trajano VN. Inhibitory effect of Cinnamomum
zeylanicum Blume (Lauraceae) essential Oil and beta-pinene on the growth
of dematiaceous moulds. Braz. J. Microbiol. 2007;
38(1):33-8.
31. Leite MCA, Bezerra APB, Sousa JP, Lima EO. Investigating the antifungal activity and mechanism(s) of geraniol against Candida albicans strains. Med. Micol. 2014;53(3):275-84.
Recibido: 22 de
enero de 2018.
Aprobado: 22 de
marzo de 2018.
Abrahão
Alves de Oliveira Filho. Unidade Acadêmica de Ciências Biológicas
(UACB). Centro de Saúde e Tecnologia Rural (CSTR). Universidade Federal
de Campina Grande (UFCG). Bairro Jatobá-Campus de Patos-PB, Brasil.
Correo electrónico:
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